俄罗斯专享会284的客户常常问，为什么我收到的产品是空管？这款产品为冻干粉形式，因其微量特点不易观察。使用前，请瞬时离心并添加适当溶剂进行溶解后再使用。

在进行细胞骨架的鬼笔环肽染色时，能否使用甲醇固定细胞呢？甲醇会损伤Actin蛋白，因此不应使用含有甲醇的固定液，建议使用不含甲醇的甲醛。

有用户提出，使用鬼笔环肽结合F-actin标记石蜡切片时为何没有观察到信号？当细胞和组织经过二甲苯或丙酮等溶剂处理（例如，在脱石蜡的过程中），这些溶剂会阻碍鬼笔环肽与F-actin的结合。此时，推荐使用通常不需要有机溶剂清洗的冷冻切片，或者采用抗肌动蛋白抗体作为替代方案。

关于探针的浓度，建议根据产品说明书中的稀释比例进行使用，具体浓度信息可能不明确。若在进行F-Actin的鬼笔环肽染色时，部分样本有染色而部分则无，且染色信号较弱，您可以尝试以下措施：（1）增加染料浓度或延长孵育时间；（2）确认所用波长是否适合，并重新检查过滤器设置的正确性。

那么，如果不进行透化步骤，鬼笔环肽能否直接染色固定后的细胞？事实上，荧光标记的phalloidins仅能在固定透化后的组织切片、细胞培养和无细胞实验中染色F-actin，因此您需要注意这一点。

若染色后没有荧光信号，应检查工作液及储液的配制是否正确。此外，固定和透化步骤至关重要，建议使用新鲜配置的4%多聚甲醛进行固定，再使用新鲜的0.5% TritonX-100进行透化，并持续摸索最佳的固定及透化时间。同时，找到适合的染色工作液浓度及染色时间，以提高实验的成功率。

关于流式细胞术的应用，该产品主要用于微丝的染色，通常使用荧光显微镜观察，不推荐用于流式细胞检测。同样，普通的荧光显微镜也是可以进行观察的，但激光共聚焦显微镜的拍摄效果则更佳。

最后，有关鬼笔环肽染料的重复使用，通常情况下，染色液在使用后可能会影响后续染色效果，因此最好不重复使用。我们的俄罗斯专享会284鬼笔环肽，在按照说明书添加时，浓度较低，这也就是为何不建议重复使用的原因。